تأثير المستخلص الإيثانولي لنبات الأشواجندا وحامض اللينوليك المعزول منه على مؤشرات الأكسدة والاختزال لدى الجرذان المصابة بالتنكس العصبي المُستحث

المؤلفون

  • وسن زهير احمد محمد قسم الكيمياء - كلية التربية للعلوم الصرفة - جامعة الموصل
  • لمى عبد المنعم بكر جاسم قسم الكيمياء - كلية التربية للعلوم الصرفة - جامعة الموصل

DOI:

https://doi.org/10.37375/susj.v15i2.3717

الكلمات المفتاحية:

الأشواجندا، التنكس العصبي، الجرذان، الأكسدة، الاختزال، حامض اللينوليك، ثلاثي كلورو الإيثيلين

الملخص

هدف هذا البحث إلى دراسة تأثير المستخلص الكحولي لنبات الأشواجندا (Withania somnifera) والحامض الدهني المعزول منه على المؤشرات الحيوية التأكسدية والاختزالية في الجرذان التي أُحدثت فيها اضطرابات تنكسية عصبية باستخدام مادة ثلاثي كلورو الإيثيلين (TCE) وتم تقسيم الحيوانات المختبرية إلى ثماني مجموعات. تلقت المجموعة الأولى (السيطرة السالبة) ماءً مقطّرًا فقط، بينما استُحدث المرض في المجموعة الثانية (السيطرة الموجبة) باستخدام TCE وعولجت المجموعة الثالثة بحامض اللينوليك، والمجموعة الرابعة بحامض البالمتيك، والمجموعة الخامسة بالمستخلص الكحولي. أما المجموعة السادسة فقد تلقت حامض اللينوليك مع المستخلص الكحولي، في حين تلقت المجموعة السابعة حامض البالمتيك مع المستخلص. أما المجموعة الثامنة فقد تلقت حامض اللينوليك أولًا ثم أُحدث فيها المرض لاحقًا.

أظهرت النتائج أن الجرذان المعالجة بمادة TCE سجّلت انخفاضًا معنويًا في كل من الكلوتاثيون (GSH) الكلوتاثيون بيروكسيديز (GPx) وحامض اليوريك (UA)، وارتفاعًا معنويًا في المالونديالدهيد (MDA) مقارنةً بمجموعة السيطرة السالبة. أظهرت الجرذان المعالجة بحامض اللينوليك أو المستخلص الكحولي أو مزيجهما، بالإضافة إلى مجموعة ما قبل المعالجة باللينوليك، ارتفاعات واضحة في GSH وGPx وUA، مع انخفاضات واضحة في MDA مقارنةً بمجموعة السيطرة الموجبة. كما أظهرت الجرذان المعالجة بحامض البالمتيك ارتفاعًا معنويًا في GPx وانخفاضًا معنويًا في كل من GSH وMDA وUA مقارنةً بالسيطرة الموجبة. وبيّنت الجرذان التي حُقنت بحامض البالمتيك مع المستخلص الكحولي ارتفاعًا واضحًا في GSH وGPx وانخفاضًا واضحًا في MDA وUA مقارنةً بالسيطرة الموجبة.

وبناءً على ذلك، سعت هذه الدراسة إلى تقصّي التأثيرات العصبية الوقائية للمستخلص الكحولي للأشواجندا ولحامض اللينوليك المعزول منه ضد التنكس العصبي المستحث بمادة TCE في الجرذان.

المراجع

Anand, U., Jacobo-Herrera, N., Altemimi, A., & Lakhssassi, N. (2019). A comprehensive review on medicinal plants as antimicrobial therapeutics: potential avenues of biocompatible drug discovery. Metabolites, 9(11), 258.

Balkrishna, A., Sinha, S., Srivastava, J., & Varshney, A. (2022). Withania somnifera (L.) Dunal whole-plant extract demonstrates acceptable non-clinical safety in rat 28-day subacute toxicity evaluation under GLP-compliance. Scientific reports, 12(1), 11047.

Basudkar, V., Gujrati, G., Ajgaonkar, S., Gandhi, M., Mehta, D., & Nair, S. (2024). Emerging vistas for the nutraceutical Withania somnifera in inflammaging. Pharmaceuticals, 17(5), 597.

Dhanani, T., Shah, S., Gajbhiye, N., & Kumar, S. (2017). Effect of extraction methods on yield, phytochemical constituents and antioxidant activity of Withania somnifera. Arabian journal of chemistry, 10, S1193-S1199.

Friend, T. A. (2012). Linoleic Acid: Sources, Antioxidant Properties and Health Benefits.

Guelcin, I., Oktay, M., Koeksal, E., Serbetci, H., & Beydemir, S. (2008). Antioxidant and radical scavenging activities of uric acid. Asian Journal of Chemistry, 20(3), 2079.

Ilieva, N. M., Wallen, Z. D., & De Miranda, B. R. (2022). Oral ingestion of the environmental toxicant trichloroethylene in rats induces alterations in the gut microbiome: Relevance to idiopathic Parkinson's disease. Toxicology and applied pharmacology, 451, 116176.

Jorfi, M., Maaser-Hecker, A., & Tanzi, R. E. (2023). The neuroimmune axis of Alzheimer’s disease. Genome Medicine, 15(1), 6.

(Khojah, E. Y., & Hafez, D. A. et al., 2020). Evaluation of Ashwagandha (Withania Somnifera) and its Extract to Protecting he Liver From Damage. In: IJERT.

Kumar, V., Kundu, S., Singh, A., & Singh, S. (2022). Understanding the role of histone deacetylase and their inhibitors in neurodegenerative disorders: current targets and future perspective. Current neuropharmacology, 20(1), 158.

Lee, M.-H., Lee, J.-H., Kim, W.-J., Kim, S. H., Kim, S.-Y., Kim, H. S., & Kim, T.-J. (2022). Linoleic acid attenuates denervation-induced skeletal muscle atrophy in mice through regulation of reactive oxygen species-dependent signaling. International journal of molecular sciences, 23(9), 4778.

Lerose, V., Ponticelli, M., Benedetto, N., Carlucci, V., Lela, L., Tzvetkov, N. T., & Milella, L. (2024). Withania somnifera (L.) Dunal, a potential source of phytochemicals for treating neurodegenerative diseases: A systematic review. Plants, 13(6), 771.

Lin, W.-Y., Tu, C.-P., Kuo, H.-H., & Kuo, H.-W. (2022). Urinary Malondialdehyde (MDA) and N-Acetyl-β-D-Glucosaminidase (NAG) Associated with Exposure to Trichloroethylene (TCE) in Underground Water. Toxics, 10(6), 293.

Lou, H., Yang, J., Liu, Q., & Yang, Q. (2024). Hazards of trichloroethylene on the liver in animals: A systematic review and meta-analysis. Emerging Contaminants, 10(4), 100338.

Mahomoodally, M. F., & MA-L, E. R. (2022). Uric acid. In Antioxidants Effects in Health (pp. 167-176): Elsevier.

Majnooni, M. B., Mohammadi, B., Jalili, R., Babaei, A., & Bahrami, G. (2016). Determination of fatty acids by high-performance liquid chromatography and fluorescence detection using precolumn derivatization with 9-fluorenylmethyl chloroformate. Journal of Liquid Chromatography & Related Technologies, 39(19-20), 877-881.

Mariamenatu, A. H., & Abdu, E. M. (2021). Overconsumption of Omega‐6 polyunsaturated fatty acids (PUFAs) versus deficiency of Omega‐3 PUFAs in modern‐day diets: the disturbing factor for their “balanced antagonistic metabolic functions” in the human body. Journal of lipids, 2021(1), 8848161.

Mohideen, K., Sudhakar, U., Balakrishnan, T., Almasri, M. A., Al-Ahmari, M. M., Al Dira, H. S., . . . Khurshid, Z. (2021). Malondialdehyde, an oxidative stress marker in oral squamous cell carcinoma—A systematic review and meta-analysis. Current Issues in Molecular Biology, 43(2), 1019-1035.

Mthembu, S. X., Mazibuko-Mbeje, S. E., Silvestri, S., Orlando, P., Marcheggiani, F., Cirilli, I., . . . Dludla, P. V. (2024). Low levels and partial exposure to palmitic acid improves mitochondrial function and the oxidative status of cultured cardiomyoblasts. Toxicology Reports, 12, 234-243.

Muslih, R., Al-Nimer, O., & Al-Zamely, M. (2002). The level of Malondialdehyde after activation with H2O2 and CuSO4) and inhibited by Desferoxamine and Molsidomine in the serum of patients with acute myocardial infection. J. chem, 5, 148.

Ou, Y., Teng, Z., Shu, Y., Wang, Y., Wang, D., Sun, C., & Lin, X. (2025). Linoleic acid alleviates aluminum toxicity by modulating fatty acid composition and redox homeostasis in wheat (Triticum aestivum) seedlings. Journal of Hazardous Materials, 487, 137156.

Palomino, O. M., Giordani, V., Chowen, J., Fernández-Alfonso, M. S., & Goya, L. (2022). Physiological doses of oleic and palmitic acids protect human endothelial cells from oxidative stress. Molecules, 27(16), 5217.

Pullaiah, C. P., SP, P. P., SK, P., Nemalapalli, Y., Birudala, G., Lahari, S., . . . Mitta, R. (2025). Exploring Withanolides from Withania somnifera: A Promising Avenue for Alzheimer’s Disease Treatment. Current Pharmacology Reports, 11(1), 1-15.

Rapp, T., Chauvin, P., Costa, N., & Molinier, L. (2015). Health economic considerations in neurodegenerative disorders. Imaging Neurodegener. Disord, 42(10.1093).

Sedlak, J., & Lindsay, R. H. (1968). Estimation of total, protein-bound, and nonprotein sulfhydryl groups in tissue with Ellman's reagent. Analytical biochemistry, 25, 192-205.

Sivasubramanian, M. K., Monteiro, R., Jagadeesh, M., Balasubramanian, P., & Subramanian, M. (2024). Palmitic Acid Induces Oxidative Stress and Senescence in Human Brainstem Astrocytes, Downregulating Glutamate Reuptake Transporters—Implications for Obesity-Related Sympathoexcitation. Nutrients, 16(17), 2852.

Sprengel, M., Laskowski, R., & Jost, Z. (2025). Withania somnifera (Ashwagandha) supplementation: a review of its mechanisms, health benefits, and role in sports performance. Nutrition & Metabolism, 22(1), 9.

Srivastava, R., Chauhan, K., & Sharma, R. (2024). Evaluating motor dysfunction and oxidative stress induced by trichloroethylene in Wistar Rats. In Neuroprotection: Method and Protocols (pp. 499-510): Springer.

Teleanu, D. M., Niculescu, A.-G., Lungu, I. I., Radu, C. I., Vladâcenco, O., Roza, E., . . . Teleanu, R. I. (2022). An overview of oxidative stress, neuroinflammation, and neurodegenerative diseases. International journal of molecular sciences, 23(11), 5938.

Tofighi, N., Asle-Rousta, M., Rahnema, M., & Amini, R. (2021). Protective effect of alpha-linoleic acid on Aβ-induced oxidative stress, neuroinflammation, and memory impairment by alteration of α7 nAChR and NMDAR gene expression in the hippocampus of rats. Neurotoxicology, 85, 245-253.

Uchiyama, A., Kon, K., Morinaga, M., Fukada, H., Yaginuma, R., Fukuhara, K., . . . Ikejima, K. (2025). Palmitic acid induces insulin resistance and oxidative stress-mediated cell injury through accumulation of lipid rafts in murine hepatocytes. Biochemical and Biophysical Research Communications, 745, 151242.

Vedi, M., Rasool, M., & Sabina, E. P. (2014). Protective effect of administration of Withania somifera against bromobenzene induced nephrotoxicity and mitochondrial oxidative stress in rats. Renal failure, 36(7), 1095-1103.

Wiciński, M., Fajkiel-Madajczyk, A., Kurant, Z., Liss, S., Szyperski, P., Szambelan, M., . . . Sadowska-Krawczenko, I. (2024). Ashwagandha’s Multifaceted Effects on Human Health: Impact on Vascular Endothelium, Inflammation, Lipid Metabolism, and Cardiovascular Outcomes—A Review. Nutrients, 16(15), 2481.

Yang, B., Zhou, Y., Wu, M., Li, X., Mai, K., & Ai, Q. (2020). ω-6 Polyunsaturated fatty acids (linoleic acid) activate both autophagy and antioxidation in a synergistic feedback loop via TOR-dependent and TOR-independent signaling pathways. Cell Death & Disease, 11(7), 607.

Zhai, Y., Wang, T., Fu, Y., Yu, T., Ding, Y., & Nie, H. (2023). Ferulic acid: A review of pharmacology, toxicology, and therapeutic effects on pulmonary diseases. International journal of molecular sciences, 24(9), 8011.

Zhang, Q., Jiang, Y., Yin, Q., Jie, L., Yu, X., Zhang, L., . . . Gang, L. (2024). Linoleic Acid Alleviates Lipopolysaccharide Induced Acute Liver Injury via Activation of Nrf2. Physiological Research, 73(3), 381.

Bot. 92:73-82. https://doi.org/10.1016/j.envexpbot.2012.07.002

Colmer TD, Voesenek L (2009) Flooding tolerance: suites of plant traits in variable environments. Funct. Plant Biol. 36 (8):665-681. https://doi.org/10.1071/fp09144

Duan HM, Ma YC, Liu RR, Li Q, Yang Y, Song J (2018) Effect of combined waterlogging and salinity stresses on euhalophyte Suaeda glauca. Plant Physiol. Biochem.127:231-237. https://doi.org/10.1016/j.plaphy.2018.03.030

التنزيلات

منشور

2025-12-24